Uudet DNA-nanokukkien biosensointitekniikat kohti seuraavan sukupolven molekyylidiagnostiikkaa

Uudet DNA-nanokukkien biosensointitekniikat kohti seuraavan sukupolven molekyylidiagnostiikkaa

Lähdesolmu: 1863337
    • Chandrasekaran AR

    DNA-nanorakenteiden nukleaasiresistenssi.

    Nat. Rev. Chem. 2021; 5: 225-239

    • Ke YG
    • et ai.

    Kaksi suunnittelustrategiaa monikerroksisen DNA-origami-taiton tehostamiseksi: alakäämitys erityistä interkalaattorin pelastusta varten ja niittien katkaisupaikannus.

    Chem. Sei. 2012; 3: 2587-2597

    • Rangnekar A.
    • LaBean TH

    DNA-DNA-nanorakenteiden rakentaminen molekyylilaskentaan, temploituihin kokoonpanoihin ja biologisiin sovelluksiin.

    Kertynyt Chem. Res. 2014; 47: 1778-1788

    • Ali MM
    • et ai.

    Pyörivän ympyrän vahvistus: monipuolinen työkalu kemialliseen biologiaan, materiaalitieteeseen ja lääketieteeseen.

    Chem. Soc. Ilm. 2014; 43: 3324-3341

    • Yan L.
    • et ai.

    Isoterminen monistettu DNA:n ja RNA:n havaitseminen.

    Mol. BioSyst. 2014; 10: 970-1003

    • Huang RR
    • et ai.

    Viimeaikainen edistys DNA-nanorakennepohjaisissa biosensoreissa kasvainmarkkerien havaitsemiseksi.

    Biosens. Bioelektroni. 2018; 109: 27-34

    • Lv Y.
    • et ai.

    Ohjelmoitavien ja monitoimisten DNA-nanokukkien valmistus ja biolääketieteelliset sovellukset.

    Nat. Pöytäk. 2015; 10: 1508-1524

    • Zhu G.
    • et ai.

    Monitoimisten DNA-nanokukkien ei-kanoninen itsekokoonpano biolääketieteellisiin sovelluksiin.

    J. Am. Chem. Soc. 2013; 135: 16438-16445

    • Xu YW
    • et ai.

    Pyörivän ympyrän monistuspohjaisten DNA-nanorakenteiden rakentaminen biolääketieteellisiin sovelluksiin.

    Biomater. Sei. 2022; 10: 3054-3061

    • Li X.
    • et ai.

    Helppokäyttöinen DNA/RNA-nanokukka telomeraasi-RNA:n herkkää kuvaamiseen elävissä soluissa vetoketjun lukitus-ja-avain-strategian pohjalta.

    Biosens. Bioelektroni. 2020; 147111788

    • Kim N.
    • et ai.

    Kasvaimeen kohdistetut kolesterolilla koristellut DNA-nanokukat solunsisäiseen ratiometriseen aptasensointiin.

    Adv. Mater. 2021; 33e2007738

    • Cai R.
    • et ai.

    Itse koottuja DNA-nanokukkia, jotka laukaisee DNA-kävelijä erittäin herkkää sähkökemiallista havaitsemista varten. Staphylococcus aureus.

    ACS Appl. Mater. Käyttöliittymät 2021; 13: 4905-4914

    • Trans TD
    • et ai.

    DNA-kuparihybridianokukat tehokkaina lakkaasin jäljittelijöinä fenoliyhdisteiden kolorimetriseen havaitsemiseen paperin mikrofluidilaitteissa.

    Biosens. Bioelektroni. 2021; 182113187

    • Dong YH
    • et ai.

    DNA:n funktionaaliset materiaalit, jotka on koottu haarautuneesta DNA:sta: suunnittelu, synteesi ja sovellukset.

    Chem. Ilm. 2020; 120: 9420-9481

    • Lee J.
    • et ai.

    Mekaaninen metamateriaali, joka on valmistettu DNA-hydrogeelistä.

    Nat. Nanotekniikka. 2012; 7: 816-820

    • Kim YS
    • et ai.

    Aptameeripohjaiset nanobiosensorit.

    Biosens. Bioelektroni. 2016; 76: 2-19

    • Mahlknecht G.
    • et ai.

    Aptameeri, joka kohdistuu ERBB2-reseptorin tyrosiinikinaasiin kasvainhoidossa.

    Menetelmät Mol. Biol. 2015; 1317: 3-15

    • Li QS
    • et ai.

    Aptameeri-modifioitu tetraedrinen DNA-nanorakenne kasvaimeen kohdistettuun lääkkeen antamiseen.

    ACS Appl. Mater. Käyttöliittymät 2017; 9: 36695-36701

    • McConnell EM
    • et ai.

    Biosensointi DNAzymeillä.

    Chem. Soc. Ilm. 2021; 50: 8954-8994

    • Yang YR
    • et ai.

    DNA-nanorakenteet ohjelmoitavina biomolekyylitelineinä.

    Biokonjug. Chem. 2015; 26: 1381-1395

    • Jaekel A.
    • et ai.

    Entsyymien ominaisuuksien manipulointi DNA:n nanorakenteilla.

    Molekyylit. 2019; 24: 24

    • Shi J.
    • et ai.

    Cas9/sgRNA:n mikroRNA-responsiivinen vapautuminen DNA-nanokukasta sytosolisen proteiinin toimittamiseksi ja genomin parannettua muokkausta varten.

    Biomateriaalit. 2020; 256120221

    • Yang YL
    • et ai.

    DNA-temploidut kvanttipisteet ja niiden sovellukset biosensoreissa, biokuvauksessa ja terapiassa.

    J. Mat. Chem. B. 2020; 8: 9-17

    • Vihreä CM
    • et ai.

    Kvanttipisteiden suora ja tehokas konjugointi DNA-nanorakenteisiin peptidi-PNA:lla.

    ACS Nano. 2021; 15: 9101-9110

    • Schlichthaerle T.
    • et ai.

    DNA:n nanoteknologia ja fluoresenssisovellukset.

    Curr. Opin. Biotekniikka. 2016; 39: 41-47

    • Wang S.
    • et ai.

    Kolmen kasvaimeen liittyvän mRNA:n samanaikainen kuvantaminen elävissä soluissa DNA-tetraedripohjaisella monivärisellä nanokoettimella.

    ACS Sens. 2017; 2: 735-739

    • Ma N.
    • et ai.

    Luminesoivien ja biofunktionalisoitujen nanokiteiden yksivaiheinen DNA-ohjelmoitu kasvu.

    Nat. Nanotekniikka. 2009; 4: 121-125

    • Jin Y.
    • et ai.

    Biohajoavat, monikäyttöiset DNAzyme-nanokukat tehostettuun syövän hoitoon.

    NPG Asia Mater. 2017; 9: e365

    • Mei L.
    • et ai.

    Itse koottuja monitoimisia DNA-nanokukkia monilääkeresistenssin kiertämiseen kohdistetussa syöpälääkkeiden toimituksessa.

    Nano Res. 2015; 8: 3447-3460

    • Kim E.
    • et ai.

    Useiden proteiiniin kapseloitujen DNA-kukkien yhden ruukun synteesi ja niiden käyttö solunsisäisessä proteiinin toimituksessa.

    Adv. Mater. 2017; 29https://doi.org/10.1002/adma.201701086

    • Shen LY
    • et ai.

    DNA-nanoteknologiaan perustuvat biosensorit ja terapiat.

    Adv. Terveysc. Mater. 2021; 10: 20

    • Joo DK
    • et ai.

    DNA-nanoteknologiaa hyödyntävä rajapintojen suunnittelu biosensorien kehittämiseen.

    Annu. Rev. Anal. Chem. 2018; 11: 171-195

    • Li F.
    • et ai.

    DNA-rungolla suunnitellut sähkökemialliset biosensorit.

    Sci. China Life Sci. 2020; 63: 1130-1141

    • Hu L.
    • et ai.

    DNAzyme-kulta-nanohiukkaspohjaiset koettimet biosensointiin ja biokuvaukseen.

    J. Mat. Chem. B. 2020; 8: 9449-9465

    • Kong GZ
    • et ai.

    DNA-nanorakenteeseen perustuvat fluoresoivat koettimet solutunnistukseen.

    Anaali. menetelmät. 2020; 12: 1415-1429

    • Prante M.
    • et ai.

    Aptasensorit pienten molekyylien paikantamiseen.

    Biosens. Basel. 2020; 10: 19

    • Crapnell RD
    • Pankit CE

    Sähköanalyyttinen yleiskatsaus: mikro- ja nanoulotteisten materiaalien hyödyntäminen sähkökemiallisiin biosensointialustoille.

    Mikrochim. Acta. 2021; 188: 268

    • Maduraiveeran G.
    • et ai.

    Kehittyneisiin nanomateriaaleihin perustuvat sähkökemialliset anturi- ja biosensorialustat biologisiin ja biolääketieteellisiin sovelluksiin.

    Biosens. Bioelektroni. 2018; 103: 113-129

    • Li SK
    • et ai.

    In situ sähkökemiluminoivien DNA-nanokukkien luominen signaalimerkkinä musiini 1:n havaitsemiseen perustuen kohde- ja jäljittelevän kohteen synkronisen syklin monistamisen strategiaan.

    Chem. Kommun. 2017; 53: 9624-9627

    • Liu YH
    • et ai.

    KemiaValitse. 2022; 7: 8

    • Yan C.
    • et ai.

    Nerokas elektrokemiluminesenssibioaptasensori, joka perustuu synergistisiin vaikutuksiin ja entsyymiohjattuihin ohjelmoitaviin 3D DNA-nanokukkiin aflatoksiini B1:n ultraherkkää havaitsemiseen.

    Anaali. Chem. 2020; 92: 14122-14129

    • Chen Y.
    • et ai.

    Synergistinen koreaktantti yksisoluiseen elektrokemiluminesenssikuvaukseen: runsaasti guaniinia sisältävät ssDNA:lla ladatut korkean indeksin fasetoidut kullan nanokukat.

    Anaali. Chem. 2021; 93: 7682-7689

    • Lv M.
    • et ai.

    Nanomateriaalipohjaisten biosensoreiden suunnittelu elintarviketurvallisuuden havaitsemiseen.

    Biosens. Bioelektroni. 2018; 106: 122-128

    • Li HB
    • et ai.

    Ohjelmoitavat DNA-piirit joustavaan ja kestävään eksitoni-plasmoni-vuorovaikutukseen perustuvaan valosähkökemialliseen biosensointiin.

    Anaali. Chem. 2021; 93: 11043-11051

    • Li Y.
    • et ai.

    Grafeenilla päällystetyt kuparilla seostetut ZnO-kvanttipisteet DNA-nanokukkien laukaiseman trombiinin herkälle fotosähkökemialliseen bioanalyysiin.

    J. Mater. Chem. B. 2021; 9: 6818-6824

    • Valero J.
    • Skugor M.

    DNA-kävelijöiden mekanismit, seurantamenetelmät ja sovellukset: katsaus.

    ChemPhysChem. 2020; 21: 1971-1988

    • Pashazadeh-Panahi P.
    • et ai.

    Biomolekyyleihin konjugoidut metalli-orgaaniset kehykset tehokkaina alustoina biosensorien kehittämiselle.

    Trac-Trends Anal. Chem. 2021; 141: 20

    • Zeng R.
    • et ai.

    Piparjuuriperoksidaasilla kapseloidut DNA-nanokukat: innovatiivinen signaalinmuodostusmerkki kolorimetriseen biosensoriin.

    Talanta. 2021; 221121600

    • Wei ZH
    • et ai.

    Bifunktionaalinen diblock-DNA-välitteinen nanokukan muotoisten fototermisten nanotsyymien synteesi syöpäsolujen erittäin herkkää kolorimetristä määritystä varten.

    ACS Appl. Mater. Käyttöliittymät 2021; 13: 16801-16811

    • Hassan EM
    • DeRosa MC

    Viimeaikaiset edistysaskeleet syövän varhaisessa havaitsemisessa ja diagnosoinnissa: Nukleiinihappopohjaisten aptasensorien rooli.

    Trac-Trends Anal. Chem. 2020; 124: 11

    • Jung ME
    • et ai.

    POCT-diagnostiikkajärjestelmät, joissa käytetään mikrofluidista lab-on-a-chip -tekniikkaa.

    Mikroelektroni. Eng. 2015; 132: 46-57

    • Qi L.
    • et ai.

    DNA nanokukka-avusteinen erotusvapaa nukleiinihapon havaitsemisalusta kaupallisella raskaustestiliuskalla.

    Angew. Chem. Int. Ed. Eng. 2021; 60: 24823-24827

    • Notom T.
    • et ai.

    Loop-mediated isothermal amplification (LAMP): periaate, ominaisuudet ja tulevaisuuden näkymät.

    J. Microbiol. 2015; 53: 1-5

    • Yu XC
    • et ai.

    Aptameeripohjainen uusi menetelmä eksosomien kompetitiiviseen fluoresenssin havaitsemiseen.

    Nanoasteikko. 2019; 11: 15589-15595

    • Liu R.
    • et ai.

    DNA-temploidut kuparin nanopartikkelit: monipuolinen alusta leimatuille biomäärityksille.

    Trac Trends Anal. Chem. 2018; 105: 436-452

    • Ma K.
    • et ai.

    Merkitön biomääritys grafeenioksidipohjaisilla fluoresoivilla aptasensorilla: Katsaus.

    Anaali. Chim. Acta. 2021; 1188: 13

    • Zhang L.
    • et ai.

    Bioinspiroitujen, kokosäädeltyjen, itsestään hajoavien syöpään kohdistettujen DNA-nanokukkien suunnittelu keinotekoisen sandwich-pohjan avulla.

    J. Am. Chem. Soc. 2019; 141: 4282-4290

    • Meng HM
    • et ai.

    Aptameeriin integroidut DNA-nanorakenteet biosensointiin, biokuvaukseen ja syövän hoitoon.

    Chem. Soc. Ilm. 2016; 45: 2583-2602

    • Han S.
    • et ai.

    Monitoimisen DNA-nanopalloviivakoodijärjestelmän synteesi solujen suoraa havaitsemista varten.

    Nanoasteikko. 2017; 9: 14094-14102

    • Yao J.
    • et ai.

    Fluoresoivien nanomateriaalien ja niihin liittyvien järjestelmien kemia, biologia ja lääketiede: uusia näkemyksiä biosensingistä, biokuvauksesta, genomiikasta, diagnostiikasta ja terapiasta.

    Chem. Ilm. 2014; 114: 6130-6178

    • Xia YQ
    • et ai.

    Viimeaikaiset edistysaskeleet korkean suorituskyvyn fluoresoivissa ja bioluminesoivissa RNA-kuvantamiskoettimissa.

    Chem. Soc. Ilm. 2017; 46: 2824-2843

    • Yu X.
    • et ai.

    Y-muotoiset DNA-välitteiset hybridinanokukat tehokkaina geenin kantajina kasvaimeen liittyvän mRNA:n fluoresenssikuvaukseen elävissä soluissa.

    Anaali. Chim. Acta. 2019; 1057: 114-122

    • Deng R.
    • et ai.

    DNA-sekvenssin koodaama pyörivä ympyräamplikoni yksisoluisen RNA-kuvantaan.

    Chem. 2018; 4: 1373-1386

    • Pu J.
    • et ai.

    Lysosomien paikantamisen mekanismit ja toiminnot.

    J. Cell Sci. 2016; 129: 4329-4339

    • Wei Y.
    • et ai.

    DNA-kukkien solunsisäisen sijainnin ja stabiilisuuden visualisointi leimatulla fluoresoivalla koettimella.

    RSC Adv. 2019; 9: 15205-15209

    • Leung NLC
    • et ai.

    Molekyylisisäisten liikkeiden rajoittaminen: yleinen mekanismi aggregaation aiheuttaman emission takana.

    Chem. euroa J. 2014; 20: 15349-15353

    • Algar WR
    • et ai.

    FRET biomolekyylisenä tutkimustyökaluna – sen potentiaalin ymmärtäminen välttäen samalla sudenkuopat.

    Nat. menetelmät. 2019; 16: 815-829

    • Frances-Soriano L.
    • et ai.

    In situ rolling circle amplification Forster-resonanssienergian siirto (RCA-FRET) pesuvapaaseen reaaliaikaiseen yhden proteiinin kuvantamiseen.

    Anaali. Chem. 2021; 93: 1842-1850

    • Desrosiers A.
    • Vallee-Belisle A.

    Luonnon inspiroimat DNA-kytkimet: sovelluksia lääketieteessä.

    nanolääketiede. 2017; 12: 175-179

    • Zhou JH
    • Rossi J.

    Aptameerit kohdennettuna terapiana: nykyiset mahdollisuudet ja haasteet.

    Nat. Palv. Huumeiden Discov. 2017; 16: 181-202

    • Li SH
    • et ai.

    MikroRNA:n bioswitchable-kuljetus runkonukleiinihapoilla: sovellus luun regeneraatioon.

    Pieni. 2021; 17: 12

    • Zhao HX
    • et ai.

    Metalli-orgaanisten kehysten kaksoisroolit nanokantajina miRNA:n kuljetukseen ja adjuvantteina kemodynaamiseen hoitoon.

    ACS Appl. Mater. Käyttöliittymät 2021; 13: 6034-6042

    • Li F.
    • et ai.

    Spatiotemporaalisesti ohjelmoitava hiusneula-DNA:n kaskadihybridisaatio polymeerisessä nanokehyksessä tarkkaan siRNA:n kuljetukseen.

    Nat. Commun. 2021; 12: 12

    • Yahya EB
    • Alqadhi AM

    Viimeaikaiset suuntaukset syöpähoidossa: katsaus geenien toimituksen nykytilaan.

    Life Sci. 2021; 269: 15

    • Voi YK
    • Park TG

    siRNA-kuljetusjärjestelmät syövän hoitoon.

    Adv. Huumeiden toimitus. Rev. 2009; 61: 850-862

    • Hosseinkhani H.
    • Domb AJ

    Biohajoavat polymeerit geenien vaimentamisessa.

    Polym. Adv. Technol. 2019; 30: 2647-2655

    • Lv J.
    • et ai.

    Ohjelmoitavat DNA-nanokukat biosensointiin, biokuvaukseen ja hoitoon.

    Kemia. 2020; 26: 14512-14524

    • Delfi M.
    • et ai.

    Itse kootut peptidi- ja proteiininanorakenteet syövän vastaiseen hoitoon: kohdennettu annostelu, ärsykkeisiin reagoivat laitteet ja immunoterapia.

    Nano tänään. 2021; 38: 29

    • Hu QQ
    • et ai.

    DNA-nanoteknologian mahdollistavat lääkkeenantojärjestelmät.

    Chem. Ilm. 2019; 119: 6459-6506

    • Yao C.
    • et ai.

    Signaaliprosessori, joka on valmistettu DNA-kokoonpanosta ja ylöskonversionanohiukkasista farmakokineettistä tutkimusta varten.

    Nano tänään. 2022; 42: 11

    • Yue S.
    • et ai.

    Pyörivän ympyrän replikointi biosensingissä, biokuvauksessa ja biolääketieteessä.

    Trends Biotechnol. 2021; 39: 1160-1172

    • Li JX
    • et ai.

    Pyöreät nukleiinihapot: löytö, toiminnot ja sovellukset.

    ChemBioChem. 2020; 21: 1547-1566

    • Kim E.
    • et ai.

    Bioinspiroitu DNA-epäorgaanisten hybridikomposiittien valmistus synteettistä DNA:ta käyttäen.

    ACS Nano. 2019; 13: 2888-2900

    • Baker YR
    • et ai.

    Mangaani-, koboltti- ja sinkki-DNA-nanokukkien valmistus ja karakterisointi viritettävällä morfologialla, DNA-sisällöllä ja -koolla.

    Nucleic Acids Res. 2018; 46: 7495-7505

    • Ge J.
    • et ai.

    Proteiini-epäorgaaniset hybridi nanokukat.

    Nat. Nanotekniikka. 2012; 7: 428-432

    • Park KS
    • et ai.

    Yksinkertainen ja ympäristöystävällinen nukleaasiresistenttien DNA-epäorgaanisten hybridien nanokukkien synteesi yhdessä ruukussa.

    J. Mater. Chem. B. 2017; 5: 2231-2234

    • Lee SW
    • et ai.

    Orgaaniset ja epäorgaaniset hybridinanokukat: tyypit, ominaisuudet ja tulevaisuuden näkymät.

    J. Nanobiotechnol. 2015; 13: 10

    • Li MF
    • et ai.

    Biomimeettinen kuparipohjainen epäorgaaninen proteiini nanokukkakokoonpano, joka on rakennettu nanomittakaavan kuitukalvolle, jolla on parannettu vakaus ja kestävyys.

    J. Phys. Chem. C. 2016; 120: 17348-17356

    • Täh.
    • et ai.

    Bioinspiroidut DNA-epäorgaaniset hybridinanokukat yhdistettynä henkilökohtaiseen glukoosimittariin miRNA:n havaitsemiseen paikan päällä.

    ACS Appl. Mater. Käyttöliittymät 2018; 10: 42050-42057

    • Äiti WJ
    • et ai.

    DNA-nanomateriaalien biologiset sovellukset: nykyiset haasteet ja tulevaisuuden suunnat.

    Signaalin siirto. Kohde. Siellä. 2021; 6: 28

  • Aikaleima:

    Lisää aiheesta Biotekniikan trendit